Introduction

優化分離純化外泌體(Exosome)的新方法    相信大家都聽說過 Exosome  (外泌體)。 Exosome 在學術研究和臨床醫學界的市場需求正迅速增長,是細胞間重要的訊息傳遞者,其所攜帶的訊息在不同環境下會有所不同,包括 DNA 、 mRNAs 、 miRNAs 及 Protein 。Exosome直徑約為 30 – 150 nm 的小囊泡,屬於細胞外囊泡 (Extracellular Vesicles, EVs) 的一類。 其外層為雙層磷脂質,表面含有多種特異性的膜蛋白,而人類骨隨間質幹細胞 (Human Mesenchymal Stem Cell, h-MSC) 就可分泌出  Exosome 。 它們具有促進組織修復再生、調節免疫系統和抑制發炎反應的功能。 因此,在臨床治療,尤其是皮膚修護及醫美領域對 Exosome 的研究及商業需求均呈現出高度品質且大量的需求。

由於面臨到這樣一系列的需求問題,本研究提供了兩種技術系統來解決這些問題。

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Material and Method

MSC-EVs generation   
    第一部分是先進行 MSC-EVs 生成。 首先,必須要先進行 h-MSC 的擴增,使用適合 h-MSCs 增殖的培養基,去進行貼壁的細胞培養。

優化分離純化外泌體(Exosome)的新方法

    h-MSCs 達到適當的細胞密度後,移除含有提供細胞養分的培養基,並用無血清或低血清的培養基去進行培養,以減少培養基中外源性外泌體的干擾。 通常在無血清培養基中培養 48 - 72 小時後,培養基中的外泌體將在這段時間內被分泌到培養基的上清液中。如此,即可完成  MSC-EVs 的生成及收取。

 

KrosFlo TFDF System - Operated in clarification mode  

優化分離純化外泌體(Exosome)的新方法

    第二部份是利用 Repligen KrosFlo TFDF System  來進行澄清。 與傳統的澄清方式不同, TFDF 是利用了 Tangential Flow (切向流) 以及 Depth Filtration (深層過濾) 的新興技術。

優化分離純化外泌體(Exosome)的新方法

    以 Tangential Flow 的部分來說,經過 Tangential Flow 的過濾後的小分子的細胞密度會高,但通道到後面就會被大分子堵住,小分子也就會無法穿透過去,樣本就會被滯留在管內無法流出。 而 Depth Filtration ,過濾通道雖然很通暢,但能得到的細胞密度就會相對很低,因為大分子都會卡在過濾器上,無法通過。 TFDF 就是結合了上述兩者的優點,解決了各自的缺點,並有效地達到了高通率以及高密度的產物。

 

KrosFlo KR2i TFF system - Concentration and Formulation Buffer Exchange  

優化分離純化外泌體(Exosome)的新方法

    隨後再配合使用Repligen KrosFlo KR2i TFF system 進行濃縮和緩衝液的置換。 利用Hollow Fiber (中空纖維膜) Tangential Flow 過濾膜,與傳統的直線流過濾(亦稱為Dead End Filtration)不同,切向流過濾中的流體是平行於過濾膜的表面流動的。

優化分離純化外泌體(Exosome)的新方法

 

    這種流動方式減少了膜表面分子的積聚,延長了過濾過程的持續時間。 液體在膜表面平行流動時,大分子和小顆粒被滯留在膜的內側,而小分子和溶劑則會通過膜成為過濾液。 藉由循環回流的方式,過濾液可以被收集或重新被導回系統進行進一步的過濾,直至達到濃縮或分離效果。 因此,此方法可同時進行濃縮與滲濾。

 

 

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Results

TFDF®: Harvest and clarification step 

優化分離純化外泌體(Exosome)的新方法

    在利用 TFDF® 使 EV 澄清的階段,使用了孔徑為 2 - 5 μm 3 cm2  TFDF® system,循環率為 2.0 - 2.2 LPM ,產生了 650 LMH 的高滲透通量。 且與原液相比,經過 TFDF 澄清後的溶液,在濁度上有極為明顯的差距。

 

TFF®: Concentration and diafiltration of clarified harvest  

優化分離純化外泌體(Exosome)的新方法

優化分離純化外泌體(Exosome)的新方法

 

    為了濃縮 TFDF 後的澄清液,此研究還進行了 flux excursions retention experiments ,以確定分子量的 cutoff 值與其他條件是在可以擴增的操作條件下的狀態。

優化分離純化外泌體(Exosome)的新方法

 

    從剛開始進入到 Concentration 當狀態時,流速有明顯的下降至約25.8 LMH ,但之後進無論是進入到下一個Diafiltration 或是第二次的Concentration,流速都有穩定的保持在幾乎一樣的流速水平。

 

優化分離純化外泌體(Exosome)的新方法

 

    在原液稀釋 50 倍的狀況下,溶液中內容物的大小範圍很廣,但經過 TFDF 澄清後,溶液中內容物的大小範圍縮小了,並範圍近乎與Exosome 的大小相同 ( 30 – 150 nm ) ,且 Permeate 中的 EV 含量<1%

 

優化分離純化外泌體(Exosome)的新方法

TFF 的階段,回收率高於了 > 90%

 

Scalability and reproducibility - Identity

優化分離純化外泌體(Exosome)的新方法

    這是針對 EV 特異性膜蛋白標記物的一個結果圖,可以看到樣品 1 是從培養基收取的,樣品 2 是經過TFDF的狀態,樣品 3 則是經過TFF後的狀態。 特異性膜蛋白標記物 CD9CD63CD81 都呈現陽性,進一步確認 EV 的正確性。

 

Scalability and reproducibility – Potency

優化分離純化外泌體(Exosome)的新方法

    vitro wound healing assay 中,使用了經過 TFF system 後所產生的 EV 樣本, > 80% 的樣本是呈現陽性的,表明在此過程中生成的 EV 尚保持了有效性。

 

Scalability of TFDF® and TFF Downstream Steps for EV

Benchtop development scale to commercialization scale

優化分離純化外泌體(Exosome)的新方法

 

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Conclusion

    在使用 TFDF system 後的 EV,最終得到的回收率來到了 86%,並通過減去了在 TFF 之前的二次深層過濾,而大幅的簡化了實驗步驟。在操作 TFF 後則是實現了高達 92% 的高效 EV 回收率。且 TFDF TFF 的高通量,也有效地使得的下游步驟處理時間,減少了至少 3 小時的製程時長。

    本研究清楚地表明,整合TFDFTFF兩種系統的技術,相較於傳統方法,不僅簡化了很多繁瑣的步驟,及縮短了時間,降低了大量製程過程中可能會汙染的風險,並實現了最終產品的高回收率、產物的高度完整性及有效性。

 

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Reference

優化分離純化外泌體(Exosome)的新方法

 

欣梗科技 / www.lefoscience.com / 03-212-6700 / info@lefoscience.com

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專為提高 DNA 生長而調配的培養基,質粒 (Plasmid) 的生產期可長達22小時以上

plasmid.jpg

無菌包裝,可立即使用。無動物產品配方,使用時只需添加少量抗生素,無需添加額外成分。小量培養至放大發酵均適用。Plasmid+® 液體培養基在室溫下儲存長達 12 個月。

 

使用者心聲 :

以往培養 250 ml 培養液經 QiagenR Hi-Speed 管柱純化獲得約 1mg/ml。使用 Plasmid+ 後,僅需培養 30 ml,即可獲得 1~1.5mg/ml。(出自 : Lab Manager / Novartis® San Diego)

提高 50 倍質體 (Plasmid) 產量的關鍵因素

 

實驗比較

LB Plasmid+ 培養四種不同 E. coli constructs24 小時候,比較不同培養基下,其質體(Plasmid)的產量。如下 :

提高 50 倍質體 (Plasmid) 產量的關鍵因素

 

更多細節

1. 提高 50 倍質體 (Plasmid) 產量的關鍵因素  Link

2.  另可參考 搖瓶的小改變,細胞與產物即可倍增 / 提高 E. Coli細胞密度與增進蛋白質表現的關鍵因子

3.  欣梗科技 / www.lefoscience.com / 03-212-6700 / info@lefoscience.com

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

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快速洗淨實驗器皿的【小撇步】

 

清洗常有的疑問是 :

確定有洗乾淨嗎 !

泡沫那麼多, 沖也沖不乾淨 !

快速洗淨實驗器皿的【小撇步】

 

可使用「速洗」實驗器皿清洗器, 清洗的原理 :

利用集中水柱, 由下往上強力噴刷內部, 污物則順勢排出, 清洗每一器皿只需 3~5 秒時間, 即可有效的清洗乾淨

快速洗淨實驗器皿的【小撇步】

 

清洗步驟 

一般清洗 :

  1. 實驗器皿先以「實驗器皿洗滌器」簡易沖刷
  2. 使用適當清潔液以軟性毛刷刷洗內部(或採用浸泡方式)
  3. 最後再以「實驗器皿洗滌器」沖洗與潤洗

使用前潤洗 :

對於清洗後, 晾置過久的器皿, 建議能先以「實驗器皿洗滌器」簡易潤洗, 再進行使用或滅菌處理

 

 

適用各種不同器皿

快速洗淨實驗器皿的【小撇步】

 

 

 

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主圖.jpg

 

由於矽膠的延展性、耐拉扯、耐機械摩擦以及半透明的等等特性,廣泛被使用於製藥界已有數十年以上的歷史。

矽膠管製作方式為經由矽膠聚合物擠壓出,經交聯反應,最後進行固化處理。而固化處理上,則有分以鉑催化添加聚合(Platinum Curing)與過氧化物啟動的自由基聚合(Peroxide Curing)二種方式。

採用經由過氧化物啟動的自由基聚合(Peroxide Curing)方式固化的矽膠管,有副產物的產生,這些副產物往往是揮發性有機酸,而此副產物可藉由高溫固化方法來去除。另一種經由鉑催化添加聚合(Platinum Curing)固化方式,以此方式固化處理則無副產物產生的問題。

因為有副產物與毒性殘留的疑慮,醫療界多採用鉑催化添加聚合(Platinum Curing)固化之吸膠管。除此之外,它尚有透明度與延展性較佳的優點。而泛用型則多採用過氧化固化(Peroxide Curing)處理的矽膠管,由於其機械性較佳,適合如蠕動幫浦的應用,價格上也比較優。

 

常用的矽膠管有如下的尺寸與種類 :

# 食品等級 醫藥等級 耐磨醫藥等級 ID/OD mm
#14 101-601-14-25 101-901-14-25 101-801-14-25 1.60 / 4.76
#16 101-601-16-25 101-901-16-25 101-801-16-25 3.17 / 6.35
#25 101-601-25-25 101-901-25-25 101-801-25-25 4.76 / 7.90
#17 101-601-17-25 101-901-17-25 101-801-17-25 6.35 / 9.50
#18 101-601-18-25 101-901-18-25 101-801-18-25 8.00 / 11.00
#15 101-601-15-25 101-901-18-25 101-801-18-25 4.76 / 9.50
#24 101-601-24-25 101-901-24-25 101-801-24-25 6.35 / 11.11
#35 101-601-35-25 101-901-35-25 101-801-35-25 7.90 / 12.70

 

 

醫藥等級矽膠管.jpg 耐磨矽膠管.jpg

 

秒懂矽膠管 Platinum 與 Peroxide 的區別

 

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塑膠耗材.jpg

 

什麼是 USP Class測試?

於生物醫藥產程中所使用之相關塑膠材料,USP Class 測試是用於確定此些材料的生物相容性的最常見的測試方法之一。

此測試共分有六個等級,其中Class VI 是屬最嚴謹的等級。其檢測主旨是在證明所使用的相關塑膠材料中所滲出的化學物質不會產生有害反應以及對身體的長期影響。

USP Class的檢測標準是由規範醫療器械和食品品質與安全的美國藥典與National Formulary (USP-NF) 所制定。針對所有材料會接觸注射藥物以及於藥物製造的過程中的相關的液體,進行測試。

 

USP VI 的測試項目

USP VI測試是採用不同的萃取液, 萃取出材料所滲出的產物(如使用聚乙二醇和植物油當萃取液),並將其注射至兔子和小鼠體內,觀察對其對滲出產物的生物反應。測試通常按照USP <88> 進行,經三項測試檢測:注射測試、皮內測試以及直接植入式測試

  • 注射試驗(急性全身毒性):
    對動物活體進行萃取物的靜脈注射,觀其察72小時。以觀察與檢測活體動物是否有任何異常的毒物反應。
  • 皮內測試:
    此測試的目的是檢查任何局部的皮膚反應。動物活體局部注射萃取物,並觀察其72小時。
  • 植入測試:
    直接將產品材料植入動物活體內,觀察與產品直接接觸的活組織在 120 小時(5 天)內的反應。

 

為什麼產品應該採用有 USP Class VI 標章

在於了解,是否有任何液體接觸的塑膠材質表面會導致有害化學物質被溶解滲出,以確保藥物的安全性,因此 USP VI 已是製藥管配件一次性系統和相關製造元件的通用標準。

 

參考:

  • Unites States Pharmacopeia, n.d., <88> Biological Reactivity Tests, In Vivo, accessed 21 August 2018, http://www.pharmacopeia.cn/v29240/usp29nf24s0_c88.html
  • NAMSA, 14 April 2014, USP Class Testing, accessed 21 August 2018, <https://www.namsa.com/toxicology/usp-class-testing>

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

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超越一般的規格 的 數位多功能型蠕動幫浦

蠕動幫浦.jpg

基本規格 :

  • 流量控制範圍 : 0.06 ~ 2,280ml/min
  • 顯示螢幕/操控      : 3.5”彩色觸控式螢幕
  • 含流量校正 / 時間設定 / 正逆轉切換 / 斷電自動復歸功能      
  • 可銜接 外部開關 / 腳踏開關 / 手動開關
  • 外接〝秤〞自動定量控制 (選配項目)       
  • 程式設定 :
    • 持續單點 rpm / 流量控制
    • 間歇停單點 rpm / 流量控制
    • 可程式30階段式rpm / 流量控制
  • 可儲存三組檔案模式

 

  超越一般的規格,滿足多功能斜槓式用途的需求 :  

蠕動幫浦應用.jpg

 

 

操作介面詳細介紹

轉速控制 (rpm)

單點轉速控制 (時間控制 / 持續運轉)

蠕動幫浦單點轉速.jpg

間歇停單點轉速控制

蠕動幫浦間歇轉速.jpg

 

可程式30階段式轉速控制

蠕動幫浦多段轉速.jpg

 

流量控制 (Flow Rate)

單點流量控制 (時間控制 / 持續運轉)

蠕動幫浦單點流量.jpg

間歇停單點流量控制

蠕動幫浦間歇流量.jpg

可程式30階段式流量

蠕動幫浦多段流量.jpg

 

 

 

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如何能快速又有效的分離純化Exosomes方法 : 中空纖維

隨著Exosome (外泌體)的研究日趨熱門,如何獲得高純度的Exosome(外泌體),對後續的研究至為重要。當前所採用的方法有超高速離心、密度梯度離心、免疫磁珠、沉澱與試劑盒等。然而以上方法皆有其相當的缺點。

MDPICells刊載了一篇採用中空纖維膜分離純化Exosomes與以離心方式處理,進行了比較:

 

樣本個別以不同分離純化方式處理後,進行檢測。所得的幾項分析檢測數據顯示,以中空纖維膜處理Exosomes明顯是優於離心 :

  • 以每10^6 細胞為單位,採用中空纖維膜 ( Hollow Fiber ) 處理,比離心式處理,多了將近 2 個對數 (Figure 1,中空纖維膜其回收率可達 10^10,而離心方式,則為 10^8)
  • 另以 100 ml培養基為單位,中空纖維膜處理能獲得的產量大約是離心的 5 (Figure 1)

如何能快速又有效的分離純化Exosomes方法 : 中空纖維 Figure 1

  • Albumin的移除乾淨程度,以中空纖維膜 ( Hollow Fiber ) 處理的效率是離心方式的 40 (Figure 2)

如何能快速又有效的分離純化Exosomes方法 : 中空纖維  Figure 2

  • 再現性測試,中空纖維膜 ( Hollow Fiber ) 經過三重複測試,其所得的大小分佈結果,大致都能一致 (Figure 3)。且經電顯檢驗,以中空纖維處理後的樣本(Figure 4)相比,離心後的樣本所能觀察得到的少很多。

如何能快速又有效的分離純化Exosomes方法 : 中空纖維 Figure 3

如何能快速又有效的分離純化Exosomes方法 : 中空纖維 Figure 4

 

以上所用的相關實驗器材 :

  1. 採用SpectrumLabsHollow Fiber,以D02-E65U-07-S去除細胞與破裂片的澄清步驟,再以D02-E500-05-S進行透析濃縮純化。
  2. 使用設備為KrosFlo Research 2i Tangential Flow Filtration System
  3. 處理方法:樣品為 0.2L 的細胞液。第一步,先將樣本濃縮至 50ml。第二步,再以5倍的 Sucrose Buffer進行置換液體 (Buffer Exchange)。最後再濃縮至 6~9 ml

 

綜合討論 :

由以上實驗分析後可得知,中空纖維膜 ( Hollow Fiber ),可將生物檢體,於非常緩和與穩定的條件下,進行快速分離純化出微量的 Exosomes。其再現性極佳,且可將過程線性放大至更大的體積量。

如何能快速又有效的分離純化Exosomes方法 : 中空纖維

以上資料參考來源 :

Busatto, S. et al., 2018. Tangential flow filtration for highly efficient concentration of extracellular vesicles from large volumes of fluid.

 

免費索取進一步詳細文章內容

 

 

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層析幫浦

 

有下面需求的,或許可立即考慮採用此套工具

  • 希望能有慢或極慢的流量、並能長時間穩定進料,甚至渴望能安穩放到過夜
  • 要求高穩定的流量
  • 體積要小,希望冰箱的一角能擺的下
  • 希望有計量裝置,可設定滴出量,並能自動停止入料
  • 經費不是那麼充裕,但規格與品質要求不能降低
  • 有層析管入料的需求

 

特色 :

  • 採6軸滾輪式蠕動幫浦,輸液穩定度高
  • 數位液晶螢幕顯示
  • 無段旋鈕式數位rpm控制流量 : 2~300 rpm
  • 可選擇「持續累計時間運轉模式」或「計時模式 99hr/59 mins/59 sec」
  • 流量範圍:0.05 ~100ml/min (依據三種管徑大小,含蓋三種不同流量範圍)
    • 採用 #13 : 0.05 ~8.75 ml/min
    • 採用 #14 : 0.15 ~ 26.25 ml/min
    • 採用 #16 : 0.57 ~ 100 ml/min
  • 可正逆轉切換:順時針和逆時針運轉,切換自如
  • 斷電來電自動復歸:因突發停電,當復電後設備可自動重新運轉
  • 配有層析管住夾具 
  • 可搭配計量秤,設定重量,並自動停機。

管柱層析優先 .... 低流量 + 高穩定度 的迷你入料裝置

(可耐 200 psi 高壓的 open column)

 

MAP.03-rpm會幫您好好地處理層析入料的工作。

 

 

若有更多層析問題,歡迎於部落格留言與我們討論

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一次讓您了解 透析(Dialysis)常見的問題

 

  1. 透析膜種類與價格?

Answer :  透析膜種類繁多,建議可參閱 透析膜選項,或直接來電洽詢 (02-28321066)。

 

  1. 透析膜使用前的前處理方法?

Answer : 透析膜種類有 RC CE膜,方法大致都是先以去離子以上等級的水浸泡 30 分鐘以上,同樣再以去離子以上等級的水沖洗,即可開始使用。另針對微量金屬與硫化物敏感的樣品,則可選擇用已預處理移除微量金屬與硫化物的 Sprctra/Por 7 RC,或是採用 Repligen的特殊清洗劑,以完全移除微量金屬與硫化物。

 

  1. 透析是如何運作的呢? 大概多久可以完成呢?

Answer : 透析乃利用膜濃度差,溶質從高濃度(樣品)擴散穿過透析膜至低濃度的區域(透析溶劑),直到達到濃度的平衡。小溶質穿過膜時,較大的溶質會被阻擋在透析袋內。將透析袋與緩衝液置放於磁力攪拌器上攪拌,每天至少更換四次緩衝液,透析的標準流程大約是1648小時。

一次讓您了解 透析(Dialysis)常見的問題

  1. 透析液體積與樣品的比例要多少?

Answer : 大體積的透析液對小分子擴散有較佳的驅動力,我們一般建議緩衝液與樣品的體積比為100:1.

 

  1. 膜孔徑的準確性如何?該如何選擇正確的MWCO透析膜?

Answer : 首先Molecular weight cut-off(MWCO)截流分子量,定義為樣品經過17小時的透析後,能保留90%以上之該樣品的分子量大小,用來當作透析膜孔徑單位,因此所選擇的透析膜孔徑大小應要小於我們所要保留的樣品分子量大小;建議透析膜的MWCO為所要保留的樣品之最大分子量至少小3倍左右,也就是假設最大保留樣品的分子量大小為60 KDa,則可選擇20 KDa以下的膜;而所要保留的溶質與所要分離的物質之間的分子量差距至少要5倍才能達到較有效的分離,否則只能採取其他相關的分離技術如層析或TFF過濾法會較有效果。

 

  1. 哪一種透析膜比較能避免膜與蛋白質結合?

Answer : 每種類型的膜對各種分子表現出不同的親和力。對於球狀蛋白,相對結合親和力是CE <RC,也就是說以CE膜來透析的話較不會吸附球狀蛋白,能達到較高的回收率。

 

  1. 該如何選擇適當的透析夾?

Answer:  首先本公司有SPECTRA/POR(Standard)UNIVERSAL兩種透析夾(參考透析夾產品連結)UNIVERSAL的夾子強度較溫和,SPECTRA/POR的夾子較緊。Standard RC membrane (Spectra/Por® 1-7)Biotech RC是由柔性再生纖維素聚合物所組成,可以適用於任一種透析夾。而Biotech CE是由較堅硬的聚合物所組成,所以需要使用較溫和的UNIVERSAL透析夾。因此若對透析夾的選擇有疑慮,可一致都使用UNIVERSAL透析夾。而透析夾長度應大於透析膜封口寬度約4-10mm

 

  1. 透析膜的效期是多久呢?

Answer : 乾燥包裝的透析膜的效期為5年。濕包裝(0.05% sodium azide solution)膜的效期為3年。

 

  1. 如果膜變乾或凍結,還能使用嗎?

Answer : 如果是濕膜變乾了,會對孔徑造成不良的影響,且膜會變脆並可能洩漏,應丟棄。如果膜凍結,冰晶可能會使膜破裂並引起洩漏。但是,您可以嘗試緩慢升高溫度,直到儲存溶液完全融化,但膜可能會不完整。

 

  1. 透析膜不含內毒素嗎?

Answer : Repligen 所供應之透析膜不含內毒素,僅供實驗用途使用。

 

  1. 若是膜上有摺痕、滾痕或折線,還能正常使用嗎?

Answer : 薄膜上的滾痕或折疊線是不會影響擴散與透析效率的。

 

  1. 為什麼CE膜比RC膜更堅硬和更不透明?

Answer : 由於纖維素酯化物(CE)中的聚合物cross-link形成更堅硬的分子晶格,而再生的纖維素膜(RC)的聚合物則形成較軟的晶格結構。而不透明是與CE膜的孔徑大小有關,孔徑越大,膜越不透明。

 

  1. 透析膜可以用化學的方式或加熱來密封嗎?

Answer : CERC透析膜只能用機械式密封。

 

  1. 處理相同的蛋白質樣品時,Spectra/Por 透析膜可以重複使用嗎?

Answer : 我們不建議重複使用透析膜,因為它們可能會因處理和透析條件(pH,溫度,化學暴露等)而受到污染,並且會改變膜的完整性或引起滲漏,尤其是在拆除和重新封裝時。

 

  1. 關於膜表面積與樣品量是否有經驗法則

Answer : 準則是 膜的表面積 / 體積之比越大,則透析越快,因此若有兩個等長的透析膜,但寬度不同,則較小寬度的透析膜具其表面積/體積比大,因此透析速度快。相對的,較大寬度的透析膜其表面積/體積之比較低,因此透析速度較慢。

 

  1. 透析高鹽濃度樣品時的最佳方法是什麼?

Answer : 高滲透壓效應下容易使膜破裂,因此建議採用漸進式的透析方式,以濃度差為10:1方式更換緩衝液。如欲透析含有5 M NaCl的樣品,就可先以含有500 mM NaCl的緩衝液來進行透析。

 

  1. 透析膜如果用於超濾,可以承受多少壓力?

Answer : 透析膜不適用於壓力過濾,其最大承受壓力為1.5 psi

 

  1. 透析時通常會使用哪些透析液(緩衝液)?

Answer : 一般於生物化學當作緩衝液,如:水 / PBS (Phosphate buffer saline) / TBS (Tris buffered saline) / HEPES / Amino Acid Buffers

 

  1. 可以使用打結的方法來取代透析夾嗎?

Answer : 強烈建議不要在管子上打結。 打結不能有效地防止洩漏。 只有透析夾才能為樣品的安全透析提供足夠的密封。

 

  1. 請問我該如何裁切適當的透析膜長度?

Answer : 參考Spectrum(Repligen)表單中所列出的透析膜管體積/長度比來計算我們所需的透析膜長度。例如:16 mm寬度的膜,體積/長度比為0.79 ml/cm,要能容納5 ml的樣品,我們會需要約6.5 cm長度的透析膜。
然而我們需要預留約10-20 %(至少1 cm) 的長度讓袋口上端留有空氣以增加浮力以及讓透析過程中水分子滲透入膜內而有微膨脹的空間,此外還要再預留頭尾兩端約2公分的長度來置放透析夾.所以總透析膜長約為11.5 cm

換算公式如下:

總長  (樣品體積) / (體積/長度) + (需添加的長度10-20%) + 4 cm

 

有相關進一步問題探討,或欲索取更多透析訊息,歡迎隨時與我們聯繫

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實驗室中常利用培養瓶培養細胞和微生物,而研究人員們該如何提高培養瓶的產量呢?

提高微生物培養量的一些小訣竅

增加產量之前,要先了解影響產量的原因

 ** 產量不佳的原因:氧氣含量不足、養分不足、培養被中斷及反覆操作實驗 **

量產的關鍵方法:

  1. 選擇培養瓶合適的振幅及轉速 (另可參閱"最人性化的震盪培養箱")
  2. 降低體積以增加氧氣轉換率
  3. 使用特殊的培養瓶 (另可參閱 "提高 E. Coli細胞密度與增進蛋白質表現的關鍵因子")
  4. 足夠的養份
  5. 減少干擾:智慧處理及線上即時監控
  6. 接種(clone)時要小心

 

首先, 選擇培養瓶合適的振幅及轉速,

振幅及轉速對氧氣轉換有很大影響,根據不同狀況調整振幅則能夠提供更好的氧氣轉換率及細胞生長的條件。

一般來說,

25 mL至2 L的培養瓶適用25 mm振幅

2 L至5 L的培養瓶適用50 mm的振幅

微量多孔盤適用3 mm的振幅,轉速約800-1000/min

以微生物(細菌,酵母,真菌)飼養為例:使用25 mm振幅,轉速約120-400/min(300/min最佳)提高微生物培養量的一些小訣竅

 

 

接著是降低培養體積以增加氧氣轉換率

培養瓶中的氧氣轉換率通常遠低於發酵槽,傳統做法為使用培養瓶中20-25%的體積空間培養,主要有利於生產生物有機物質、低耗氧生物及生長速率較慢之培養物,但可能會降低氧氣轉換率而不利於細胞生長。

若實驗方法並無限制生長條件,確保最大的液/氣界面的面積以利培養瓶中的氧氣和二氧化碳交換才能提高產量。

將培養量減少到培養瓶體積的10%,轉動時液體會均勻分布於瓶壁,增加液/氣界面的面積而提高氧氣轉換率。

 

使用特殊的培養瓶也能使產量提高,

常見的錐形瓶表面光滑,能使液體於瓶中均勻混合,但不利於氧氣交換,故並非專門作為培養之容器。

特殊設計的培養瓶如Fernbach,其瓶底擋板的作用與發酵槽中的擋板相同,能在培養瓶底端型成湍流區域擾亂液體培養物的平穩流動而改善了氣體傳輸,甚至使培養瓶利於動物細胞培養。

Thomson Optimum Growth養瓶是更專業的容器,有獨特的設計及擋板,適用於哺乳動物、昆蟲和微生物細胞,且能利用培養瓶中60%的體積空間培養,提高產量。而為了增加產量及符合此培養瓶的特性,需有特殊的培養空間及shaker配合。

提高微生物培養量的一些小訣竅

 

足夠的養份也是量產的重要條件,

細胞生長狀況受多種因素影響,故無法僅依靠改善氧氣轉換率去增加細胞的生長,如碳源耗盡時,無論有多少氧氣,細胞都不會達到更高的密度。因此,培養液及營養添加劑的選擇非常重要。

建議培養液中要有:基質(碳來源)、氮來源、外加微量元素和維生素、緩衝液(維持理想pH值)

基質濃度過高會抑制細胞生長,培養初期不宜將大量基質(如葡萄糖)加入培養瓶中,而是要透過定時投放基質來維持細胞生長。

在培養瓶中加入基質可透過手動及自動,而使用aquila biolabs LIS(液體注射系統)能簡化一系列補充基質的過程,不中斷培養且省時省力。

 

此外,利用智慧處理及線上即時監控減少培養時的干擾也能讓產量提升,

開啟培養箱取出培養瓶時會造成熱能流失及中斷晃動,可能會破壞細胞正常的生長曲線而影響實驗,因此應避免重複開門或長時間取出燒瓶

減輕影響的方法:快速停止並重新啟動(減少停機時間)、使環境快速回到設定狀態、自動進料、線上即時監控

研究所需的監測數據通常要透過取樣,且無法從單一培養瓶獲得,而取樣會破壞最佳的生長環境且容易有人為錯誤,如分析錯誤或數據遺漏,這些都會對實驗結果造成負面影響。

aquila biolabs CGQ (Cell Growth Quantifier) 可以在不影響樣本的狀況下準確、連續地測量培養瓶中的生物質濃度,且能同時測量多個培養瓶。

提高微生物培養量的一些小訣竅

最後則是減少培養物本身的影響,

細胞株必須搭配正確的培養基類型,且本身能夠使用培養瓶進行培養(不受剪切力影響),

為了使細胞快速生長,必須使用處於對數生長期且新鮮的細胞株

提高微生物培養量的一些小訣竅

 

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